细胞增殖是生物体生长、发育、繁殖、遗传的基础,是细胞最基本的生理活动。生长因子、激素及癌基因产物等均可诱导细胞的增殖或抑制细胞的增殖,通过影响细胞周期的运行、细胞凋亡的改变而实现。
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细胞增殖及相关服务 |
服务流程
服务说明
MTT检测细胞增殖 MTT为一种化合物,全称为3-(4,5)-dimethylthiahiazo (-z-y1)-3,5-di- phenytetrazoliumromide。MTT比色法,是一种检测细胞存活和生长的方法,其检测原理为活细胞线粒体中的琥珀酸脱氢酶能使外源性MTT 还原为水不溶性的蓝紫色结晶甲瓒并沉积在细胞中,而死细胞无此功能。二甲基亚砜能溶解细胞中的甲瓒,用酶联免疫检测仪在 490nm波长处测定其光吸收值,在一定细胞数范围内,MTT结晶形成的量与细胞数成正比,因此MTT的吸光值可间接反映活细胞数量。该方法已广泛用于抗肿瘤药物筛选、细胞毒性试验以及肿瘤放射敏感性测定等。吉凯实验实例: 不同基因的过表达慢病毒感染细胞,继续培养三天后,收集对数期细胞,向96孔板每孔加入2000个细胞,细胞培养箱孵育至细胞贴壁,向孔板中加入MTT溶液,并继续培养4h。最后去除MTT,加入二甲基亚砜溶解MTT,酶标仪读取OD490时的吸光值。 ![]() CON:未处理细胞实验组; NC:对照慢病毒感染实验组; OE:目的基因过表达慢病毒感染实验组。 结论:目的基因过表达后,细胞生长受到抑制。 收费标准:2250元/组,MTT检测在96孔板中进行,60孔为一组实验。
克隆形成实验 是测定细胞的增殖能力的有效方法之一。单个细胞在体外持续6代以上,其后代所组成的细胞群称为克隆。这时每个克隆含有50个以上的细胞,大小在0.3~1.0mm之间,通过计数克隆形成率,可对单个细胞的增殖潜力做定量分析,了解细胞的增殖能力和独立生存能力。常用的方法有:平板克隆形成实验和软琼脂形成实验。吉凯基因实验实例: 1、平板克隆形成:分别将阴性对照靶点和目的基因有效靶点慢病毒感染细胞,四天后,将处于对数生长期的细胞消化,计数后在6孔板培养板中接种500个细胞/孔,静置培养2周,中途隔3天换液并观察细胞状态,出现肉眼可见的克隆即终止培养,用多聚甲醛固定1h,再用Giemsa染色后,计数大于10个细胞的克隆。得到的实验结果如下: ![]() 实验结论:感染了目的基因靶点病毒的细胞,克隆形成能力减弱。 2、软琼脂克隆形成:分别将阴性对照靶点和目的基因有效靶点慢病毒感染细胞,四天后,将处于对数生长期的细胞消化;在孔板底部铺0.6%的琼脂糖,上层使用0.3%的琼脂糖和细胞的混液,置入培养箱中继续培养10天。把平皿放置在倒置显微镜下,观察细胞克隆数。得到的实验结果如下: ![]() 实验结论:感染了目的基因靶点病毒的细胞,克隆形成能力减弱。 收费标准:375元/well。
细胞周期 指细胞一个世代所经历的时间。从一次细胞分裂结束到下一次分裂结束为一个周期。细胞周期反应了细胞增殖速度。单个细胞的周期测定可采用缩时摄影的方法,但它不能代表细胞群体的周期,故现多采用其他方法测群体周期测定细胞周期的方法很多,最常用的是PI渗入测定细胞周期。PI ,即碘化丙锭,可以与细胞内DNA 和RNA 结合,采用RNA酶将RNA消化后,通过流式细胞术检测到的与DNA 结合的PI 的荧光强度直接反映了细胞内DNA含量的多少。由于细胞周期各时相的DNA 含量不同,通常正常细胞的 G0/G1 期具有二倍体细胞的DNA含量(2N) ,而G2/ M 期具有四倍体细胞的DNA 含量(4N) ,而S 期的DNA含量介于二倍体和四倍体之间。因此,通过流式细胞术PI染色法对细胞内DNA 含量进行检测时,可以将细胞周期各时相区分为 G0/G1 期,S 期和G2/ M 期,并可通过特殊软件计算各时相的百分率。应用实例 分别将阴性对照靶点和目的基因有效靶点慢病毒感染细胞,继续培养四天后,洗涤消化并用预冷的70% 乙醇溶液固定细胞,1h后,PI染色,流式细胞仪检测,得到的周期实验结果如下: ![]() 实验结论:感染目的基因靶点病毒后,细胞处于G1期的细胞显著增加,处于S期的细胞显著减少,提示目的基因与细胞的周期分布显著相关。 收费标准:375元/well。
细胞凋亡 是指细胞在一定的生理或病理条件下,遵循自身的程序,自己结束其生命的过程。它是一个主动的,高度有序的,基因控制的,一系列酶参与的过程。细胞凋亡的过程大致可分为以下几个阶段:接受凋亡信号→凋亡调控分子间的相互作用→蛋白水解酶的活化(Caspase)→进入连续反应过程。
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