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​蔗糖酶试剂盒实验分光光度法测定详解

浏览次数:136 发布日期:2024-11-22  来源:本站 仅供参考,谢绝转载,否则责任自负
正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定。

测定意义:
蔗糖酶(sucrase)(EC 3.2.1.26)是碳水化合物消化吸收的关键酶之一,能够水解蔗糖变成相应的单糖而被机体吸收。

测定原理:
本试剂盒采用3.5-二硝基水杨酸法测定蔗糖酶催化产生的还原糖的含量,由此可得出蔗糖酶水解速度。其原理是3.5-二硝基水杨酸与还原糖共热被还原成棕红色的氨基化合物,在一定范围内还原糖的量和反应液的颜色深度成正比。此法操作简便、迅速、杂质干扰较小。

所需的仪器和用品:
可见分光光度计、沸水浴、可调式移液器、1mL玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。

试剂的组成和配制:
提取液:液体60mL×1瓶,4℃保存;
试剂一:液体2.5mL×1瓶,4℃保存;
试剂二:粉剂×1支 ,4℃保存,用时加入1.5mL蒸馏水充分溶解;用不完的试剂4℃保存;
试剂三:液体5mL×1瓶,常温保存;

样品测定的准备: 
按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1mL提取液),进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。

加样表和测定步骤:
试剂名称(μL) 对照管 测定管
试剂一 50 50
蒸馏水 50  
样本  100 100
试剂二   50
置于25℃准确水浴10min
试剂三 100 100
混匀, 95℃水浴5min左右(盖紧,防止水分散失),冷却至室温
蒸馏水 700 700
混匀,520nm蒸馏水调零,测定各管吸光值,ΔA=A测定-A对照,每个测定管设一个对照管。

蔗糖酶活力计算:
1、标准条件下测定的回归方程为y = 0.1296x -0.12x为标准品浓度(mg/mL),y为吸光值。
2、按照蛋白浓度计算
单位定义:每mg组织蛋白每分钟催化水解1μg蔗糖定义为一个酶活力单位。
蔗糖酶活力(μg/min/mg prot)=[1000×(ΔA+0.12)÷0.1296×V1]÷(V1×Cpr)÷T=771×(ΔA +0.12)÷Cpr。
3、按样本鲜重计算
单位定义:每g组织每分钟催化水解1μg蔗糖定义为一个酶活力单位。
蔗糖酶活力(μg/min/g鲜重)=[1000×(ΔA+0.12)÷0.1296×V1]÷(W×V1÷V2)÷T=771×(ΔA +0.12) ÷W。
1000:1mg/mL=1000μg/mL;V1:加入反应体系中样本体积,0.1mL;V2:加入提取液体积,1mL;T:反应时间,10min; Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本鲜重,g。
来源:上海博湖生物科技有限公司
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