免疫荧光（IF）实验操作过程
免疫荧光技术(Immunofluorescence technique )又称荧光抗体技术，免疫荧光技术是根据抗原抗体反应的原理，先将已知的抗原或抗体标记上荧光素，制成荧光抗体，再用这种荧光抗体（或抗原）作为探针检测组织或细胞内的相应抗原（或抗体）。在组织或细胞内形成的抗原抗体复合物上含有标记的荧光素，利用荧光显微镜观察标本，荧光素受外来激发光的照射而发生明亮的荧光（黄绿色或橘红色），可以看见荧光所在的组织细胞，从而确定抗原或抗体的性质、定位，以及利用定量技术测定含量。
免疫荧光实验操作步骤：
一、固定和透化
1. 在培养板中将已爬好细胞的盖玻片用1 × PBS浸洗3次，每次3 min。
2. 用4%的多聚甲醛固定爬片15 min，1 × PBS浸洗玻片3次，每次3 min。
3. 0.5% Triton X-100(1× PBS配制 )室温通透细胞15 min（细胞膜上表达的抗原省略此步骤）, 1 × PBS浸洗玻片3次，每次3min。
二、封闭
4. 吸水纸吸干1 ×PBS，在玻片上滴加5%的正常血清（与二抗种属来源一致或相似），室温封闭1 h。
三、抗体孵育
5. 吸水纸吸掉封闭液，不洗，每张玻片滴加足够量的稀释好的一抗并放入湿盒，4 ℃孵育过夜。
6. 加荧光二抗： PBST 浸洗爬片3次，每次3 min，吸水纸吸干爬片上多余液体后滴加稀释好的荧光二抗，湿盒中37℃孵育1 h，PBST浸洗爬片3次，每次3 min。
注意：从加荧光二抗起，后面所有操作步骤都尽量在较暗处进行。
四、固定拍照
7. 复染核：滴加DAPI避光孵育5 min，对标本进行染核，PBST 5 min×4次洗去多余的DAPI。
8. 用吸水纸吸干爬片上的液体，用含抗荧光淬灭剂的封片液封片，在荧光显微镜下观察采集图像。
免疫荧光实验操作步骤：
一、固定和透化
1. 在培养板中将已爬好细胞的盖玻片用1 × PBS浸洗3次，每次3 min。
2. 用4%的多聚甲醛固定爬片15 min，1 × PBS浸洗玻片3次，每次3 min。
3. 0.5% Triton X-100(1× PBS配制 )室温通透细胞15 min（细胞膜上表达的抗原省略此步骤）, 1 × PBS浸洗玻片3次，每次3min。
二、封闭
4. 吸水纸吸干1 ×PBS，在玻片上滴加5%的正常血清（与二抗种属来源一致或相似），室温封闭1 h。
三、抗体孵育
5. 吸水纸吸掉封闭液，不洗，每张玻片滴加足够量的稀释好的一抗并放入湿盒，4 ℃孵育过夜。
6. 加荧光二抗： PBST 浸洗爬片3次，每次3 min，吸水纸吸干爬片上多余液体后滴加稀释好的荧光二抗，湿盒中37℃孵育1 h，PBST浸洗爬片3次，每次3 min。
注意：从加荧光二抗起，后面所有操作步骤都尽量在较暗处进行。
四、固定拍照
7. 复染核：滴加DAPI避光孵育5 min，对标本进行染核，PBST 5 min×4次洗去多余的DAPI。
8. 用吸水纸吸干爬片上的液体，用含抗荧光淬灭剂的封片液封片，在荧光显微镜下观察采集图像。
