大鼠Insulin定量EIA试剂盒使用说明
浏览次数:1609 发布日期:2011-8-1
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大鼠Insulin定量EIA试剂盒使用说明
原理
本实验采用双抗体夹心 ELISA法。用抗大鼠Insulin单抗包被于酶标板上,标准品和样品中的 Insulin与单抗结合,加入酶标抗体,形成免疫复合物连接在板上,加入酶底物TMB,出现蓝色,加终止液硫酸,颜色变黄,在450nm处测OD值,Insulin浓度与OD值成正比,可通过绘制标准曲线求出标本中Insulin浓度。
试剂盒组成(2-8℃保存)
酶标板(Coated Wells)
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96孔
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酶标抗体工作液(Enzyme Conjugate)
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6ml
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标准品(Standards):6瓶
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一套
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20×浓缩洗涤液(Wash Buffer)
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50ml
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封板纸
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一张
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底物工作液(TMB Solution)
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12ml
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坐标纸
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一张
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终止液(Stop Solution)
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12ml
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准备试剂与收集血样
1. 收集标本:血清、血浆(EDTA、柠檬酸盐、肝素抗凝)、细胞培养上清液、组织匀浆等尽早检测,2-8℃保存48小时;更长时间须冷冻(-20 ℃或-70 ℃)保存,避免反复冻融。
2. 标准品第一次使用时用0.5ml的蒸馏水溶解,放置半小时混匀后使用,用后放在-20oC保存。溶解后浓度分别为14、8、3.2、1.6、0.8、0 ng/ml。
3. 标本如果需要稀释可以用蒸馏水稀释。
4. 洗涤液:用重蒸水1:20稀释(示例:1ml浓缩洗涤液加入19ml的重蒸水)
检测程序
1. 建立标准曲线:设标准孔6孔,每孔各加入标准品50ul。
2. 加样:待测品孔每孔各加入待测样品50ul。
3. 每孔加酶标抗体工作液50ul。将反应板置37℃120分钟。(室温过夜可以提高灵敏度)
4. 洗板:同前。
5. 每孔加入底物工作液100ul,置37 ℃暗处反应15分钟。
6. 每孔加入100ul终止液混匀。
7. 30分钟内用酶标仪在450nm处测吸光值。
结果计算与判断
1. 所有OD值都应减除空白值后再行计算。
2. 以标准品14、8、3.2、1.6、0.8、0ng/ml为横坐标,OD值为纵坐标,在坐标纸上作图,画出标准曲线。
3. 根据样品OD值在该曲线图上查出相应Insulin含量。
试剂盒性能
1. 灵敏度:最小的Insulin 检测浓度小于0.4ng/ml。
2. 特异性:可同时检测重组或天然的大鼠Insulin。不与大鼠其它细胞因子有交叉反应。
3. 重复性:板内、板见变异系数均小于10%。
注意事项
1. 以上标准孔及待测样品均建议做复孔,每次测定应同时做标准曲线。
2. 洗涤过程很关键。洗涤不充分将导致精确度误差及OD值错误地升高。
3. 板条开封后剩余板条要再封好,保持板条干燥。
4. 本试剂盒宜置4oC冰箱保存。
5. 本试剂盒仅用于科研,不能用于临床诊断!