金黄色葡萄球菌核酸检测试剂盒(一管式PCR-荧光探针法)
◆ 产品说明
致病菌检测系列可针对食品、饲料等样品中的致病微生物的特异核酸片段进行扩增,仪器实时监测扩增过程中的荧光信号变化,自动判读结果。本产品用于金黄色葡萄球菌的检测。检出限为103 CFU/ml。
◆ 产品组成(96测试)
011072LⅡ |
|
试剂 |
含量 |
A-SA-P |
20μL × 8管× 12排 |
NG-P |
100μl× 3支 |
PG-SA-P |
100μl× 2支 |
◆ 适用仪器
ABI 7500、CFX 96、Mx 3005P、LineGene9600等实时荧光PCR仪。
◆ 自备耗材和仪器
①冰盒;②移液器(0.5-10μL,10-100μL,100-1000μL)及配套灭菌吸头;③离心机;④涡旋混匀器;⑤金属浴;⑥均质机、搅拌机或研钵等研磨器具;⑦电子天平。
◆ 注意事项
1.本试剂检测灵敏度高。为了防止污染,实验要分区操作。
1)第一区:样本制备区。
2)第二区:模板添加区。
3)第三区:扩增及产物分析区。
★ 分区之间最好进行物理性隔离,避免人为因素造成的污染。
2.实验过程中穿戴工作服和乳胶手套,不同区域独立使用工具,需更换手套和实验服。
3.严格按照操作步骤操作,试剂配制和加样等步骤请严格按照说明书要求在冰盒上操作。
4.反应液中的成分对光敏感,应避光保存。试剂使用前要完全解冻,但应避免反复冻融,推荐使用前离心30秒,并按检测频次将反应液以适当体积分管保存。
5.反应结束后,扩增管请置于密封袋内丢弃,当日清理,开盖易造成气溶胶污染,禁止开盖。
6.不同批号试剂请勿混合使用,在有效期内使用。
◆ 样品处理
参照《GB 4789.10-2016 食品安全国家标准 食品微生物学检验 金黄色葡萄球菌检验》中的5.1处理样品,对样品进行前增菌,制备的菌液保存待用。
称取25 g 样品至盛有225 mL 7.5% 氯化钠肉汤或10% 氯化钠胰酪胨大豆肉汤的无菌均质杯内,8000~10000 r/min 均质1~2 min,或放入盛有225 ml 7.5% 氯化钠肉汤或10% 氯化钠胰酪胨大豆肉汤的无菌均质袋中,用拍击式均质器拍打1~2 min。若样品为液态,吸取25 ml样品至盛有225 ml 7.5% 氯化钠肉汤或10% 氯化钠胰酪胨大豆肉汤的无菌锥形瓶(瓶内可预置适量无菌玻璃珠)中,振荡混匀。将上述样品匀液于36℃ ± 1℃ 培养18 h ~ 24 h。
详细步骤请按照标准操作或查阅食安通软件。
◆ 实验操作
1. 模板制备(样本制备区)
建议使用试剂配套细菌组DNA提取系列产品,具体过程详见产品说明书。
2.添加模板(样本制备区,放置于冰盒中进行)
剪下所需测试数的已含有反应液的PCR管,放置在室温待解冻后,离心30秒后揭开封口膜,向每管反应液中分别加入5μL模板,顺序为NG、待测样品模板、PG-SA-P。盖好配套的PCR管盖后,涡旋混匀30s,离心1min,立即进行PCR扩增反应。
3. 扩增反应(扩增及产物分析区)
使用荧光定量PCR仪,荧光基团选择FAM,淬灭基团选择TAMRA。
按下列条件设置扩增反应:
PCR循环 |
荧光收集位点 |
||
95℃ |
3分钟 |
1个循环 |
— |
94℃ |
5秒 |
40个循环 |
— |
60℃ |
40秒 |
※ |
4.基线和阈值设定
基线调整取3-15个循环的荧光信号,阈值线应超过阴性对照扩增曲线的最高点。
◆ 结果判定
检测样品无Ct值或≥40.0,曲线为直线或轻微斜线,无“S”型扩增曲线,可报告样品阴性,不含有金黄色葡萄球菌或含量低于检测限;
检测样品Ct≤35.0,曲线呈“S”型扩增曲线,可直接报告样品阳性,含有金黄色葡萄球菌;
检测样品35.0<Ct<40.0,需进行一次重复实验,若Ct值≥40.0则为阴性,否则为阳性。