引物常见纯化方法的原理及效果
浏览次数:766 发布日期:2022-7-19
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常见的几种纯化方法如C18柱、OPC或HAP、PAGE、HPLC。公司采用HAP、ULTRA PAGE、HPLC三种纯化方法,其纯化的原理及其效果分别如下,我们建议客户应根据不同的实验需求,选择合适、经济并有效的纯化方法。
1. HAP纯化方法
HAP(HighAffinityPurification)是生工生物自主开发的新型oligoDNA纯化方法。该方法已取得国家专利(专利号:200310208040.X)。其原理是利用合成引物5'-端DMT基团对HAP树脂专一性吸附,而不含DMT的短链DNA不被吸附,从而达到分离纯化的目的。
HAP纯化柱中装有对 DMT 具有亲和力的树脂,合成DNA 片段时保留 5'端最后一个碱基上的 DMT,所有合成产物吸附在柱上以后,用稀的有机溶剂洗柱,带有 DMT 的片段吸附能力强,不易被洗脱,不带有 DMT 的片段吸附能力弱,被洗脱。然后用三氟乙酸 TFA 或三氯乙酸 TCA 脱去 DMT 基团,再用浓一点的有机溶剂洗脱 DNA。这种方法具有多快好省的特点。制品纯度可达到80~90%,可以满足杂交探针、测序、常规PCR(不再做进一步克隆实验)等用途了。但是因为其专一性吸附 DMT 能力有限,不免仍然有短片段带入的可能,而且负载量小。特别是对长于39 碱基以上的片段纯化效果不好。此级别只提供长度在10-39mer以下的合成oligo DNA制品。序列更长时,制品的纯度得不到保证。若考虑节约经费,对于要求较低的实验,如简单的PCR反应,则采用HAP纯化即可。
2. ULTRA PAGE纯化方法
PAGE (Polyacrylamide Gel Electrophoresis),该方法是使用变性聚丙烯酰胺凝胶电泳,对DNA片段进行分离,然后从凝胶中回收目的DNA的方法。PAGE纯化基于尺寸和构象分离全长产物和失败序列,可以分离相差一个碱基的引物(120碱基以内),从而提供高纯度的引物。纯化后的DNA纯度大于90%,相比与其他两种方法,PAGE纯化对长链Oligo DNA (大于50 mer)的纯化特别有效,制品纯度保证90 ~ 95%。如订购的DNA欲用作RT-PCR引物、各种探针,或用于PCR克隆测序、定点突变等,请选用PAGE纯化制品。
ULTRA PAGE:理论上分析型PAGE变性电泳,可以区分引物之间一个碱基的差别。经过PAGE纯化的引物,特别是长引物要的量都比较高,上样量都是非常大,电泳时的条带往往比较宽,带与带之间有重叠,分辨率有所下降,电泳后割带回收目的引物时,导致割的条带有时可能比较宽,很难避免割到差别仅一个或几个碱基的引物。因此生工生物为了给客户更好解决以上问题,将原有的PAGE纯化方式升级优化为现在的ULTRA PAGE纯化方式,即在PAGE纯化的同时配合质谱对DNA进行定性分析,以保证回收片段的正确性。
3. HPLC纯化方法
HPLC (High Performance Liquid Chromatography)是使用高效液相色谱的原理,依据DNA的疏水性来分离产物的。合成粗产物中不同长度的 DNA 片段的疏水性不同,一般来说较长的片段具有较强的疏水性,AT含量高的片段也具有较强的疏水性。先将粗产物检测主峰位置,再增加加样量,回收主峰位置的部分。该方法用于分离纯化时能达到很高的纯度和灵敏度,可以有效的去除大部分N-短片段,因而可以除去失败序列或未结合的标记物,从而对DNA片段进行纯化。同时配合质谱对DNA进行定性分析,以保证回收片段的正确性。由于HPLC产品的纯度非常高,使用本法纯化的DNA制品可适用于各种基因工程实验。主要用于PCR克隆、定点突变、人工合成基因、长链和修饰引物的纯化等。它的优点是自动化程度高、省人力;弱点是纯化量通量小、成本较高。