MabSelect SuRe™:单克隆抗体捕获步骤工艺开发的快速入门
在单克隆抗体纯化中,为了获得所需高质量的抗体,一般使用两步或三步层析步骤。通常,用于三步工艺的层析介质为Protein A→阳离子交换→阴离子交换;用于两步工艺的层析介质为Protein A→Capto adhere(多模式离子交换)。所有的单克隆抗体(Mabs)都有一些相似的特性,所以可以使用同一个平台方法纯化。请注意,平台并不意味着相同的工艺,它只是表示工艺的某些方面不需要从头开始开发,因为可以利用以前单克隆抗体工艺开发经验。
本次讨论的目的是提出一种纯化工艺,它可以用于哺乳动物细胞生产的大多数Mabs的纯化工艺。这里我们介绍一种基于MabSelectTMSuRe层析介质做工艺开发的一般起始建议(未优化)。
MabSelectTMSuRe 是一种Protein A层析介质,耐受苛刻和具有成本效益的CIP程序,即0.1-0.5 M NaOH。
用于工艺开发的推荐途径是使用高通量工艺开发(HTPD)--使用PreDictor™96孔板可以在短时间内评估大量的层析参数(参考文献1)。然后最佳工艺参数被放大,即HTPD→实验室规模→中试车间→生产。这种方法提供了大量的对于Quality by Design (QbD)方法尤其有用的数据。甚至当使用HTPD时,下一个表格中的一些信息可以作为起点使用。

系统 |
控制 |
层析介质 |
层析柱 |
床高度(cm) |
CV(ml) |
ÄKTA™ avant 25或150 |
UNICORN™ 6 |
MabSelect SuRe |
Tricorn™ 10/200 |
20 |
15.71* |
用于MabSelect SuRe捕获步骤的层析方法
步骤 |
体积或时间 |
缓冲液组成 |
保留时间,分钟(线性流速,cm/hr) |
0.仅在保存后-平衡 |
3 CV |
20 mM 磷酸钠, 0.15M NaCl, pH 7.4 |
7.5 (160 cm/hr) |
1.平衡 |
0.25 CV |
20 mM 磷酸钠, 0.15M NaCl, pH 7.4 |
3.4 (350 cm/hr) |
2.上样 |
5%穿透时80%的动态载量 |
按需要 |
2.4-4.8 (500-250 cm/hr)
长保留时间 → 高结合容量 |
3.清洗 |
3 CV |
20 mM 磷酸钠, 0.15M NaCl, pH 7.4 |
2.4-4.8 (500-250 cm/hr) |
4.中间清洗 |
2 CV |
25 mM 磷酸钠, 0.5M NaCl, pH 7.0,
(5%异丙醇, 可选) |
3.4 (350 cm/hr) |
5.清晰 |
3 CV |
20 mM 磷酸钠, 0.15M NaCl, pH 7.4 |
3.4 (350 cm/hr) |
6.洗脱 |
经过紫外检测器控制或在预先测定的体积处 |
0.1 M 乙酸, pH 2.9** |
3.4 (350 cm/hr) |
7.CIP |
2 CV=15min |
0.1M NaOH |
7.5 (160cm/hr) |
8.再平衡 |
3 CV |
20 mM 磷酸钠, 0.15 M NaCl, pH 7.4 |
3.4 (350 cm/hr) |
9.仅在最后一轮运行后-保存 |
4 CV |
20% 乙醇 |
7.5 (160 cm/hr) |
注释:除了上样步骤外,对于其他步骤可以把流速提高至500 cm/hr;
大约总的循环时间*** ~ 17CV x 2.4 min/CV + 11CV x 3.4min/CV + 2 CV x 7.5 min/CV ~ 95min ~ 1.6小时。即使你做两次,总时间大约为3.2小时。没有生产中的限速步骤。
基本的简化工艺开发
上样准备-样品在上样到MabSelect SuRe层析柱前必须经过过滤。至少必须使用无菌过滤器;另外,在无菌过滤前可以使用吸附深度过滤器。在细胞培养物收获后,应该尽快完成运行。在细胞培养物运行前需要被保存的情况,应该经过无菌过滤并保存在4℃,或者冷冻保存(如可能)。
Run #0–空白运行-为了去除非共价固定的配基,应该在新的MabSelect SuRe层析介质上第一轮运行前进行空白运行,从而减少层析期间的配基泄露。上面列出的层析方法的所有阶段应使用两种变化-首先,在上样阶段应使用平衡缓冲液(即不含蛋白质),其次,空白运行的洗脱阶段应被设置为3个柱体积,且不受监测功能的控制。
Run #1 –上样条件-下一个实验应该运行以确定MabSelect SuRe层析柱在2.4-4.8分钟保留时间内对你的Mab的动态结合载量(DBC)。按照上述程序并使层析柱过载达到50 g/L,收集穿透组份,然后测定穿透组份中的Mab浓度,并计算5%穿透。
Run #2–设置上样条件到5%穿透时80%动态载量,然后遵循上述所有步骤。如果这轮运行产生可接受的纯度、质量和产量水平,可以锁定这里所使用的工艺。
分析-在调节到下一步的上样条件和通过无菌过滤器过滤后,分析Protein A步骤样品的纯度和质量。此外,在2或3步基于平台工艺的层析步骤后,必须分析纯度和质量。如果上述导致洗脱组份中的低产量或高宿主细胞蛋白残留(HCP),则须优化清洗和洗脱条件完成进一步的工艺开发。
清洗条件-GE Healthcare已经完成了各种清洗条件的探索研究。为了了解更多关于这些研究的信息,请向您当地GE Healthcare公司的代表索取《讨论对于Protein A的中间清洗步骤》的科学海报(参考文献3)。
洗脱条件-可以考虑各种洗脱条件,例如柠檬酸缓冲液(10-100 mM)或甘氨酸。当优化洗脱条件用于更好的杂质清除时,确定抗体有效解吸的最高pH,然而,这可能会增加洗脱组份体积。另外,设计洗脱条件以匹配用于病毒灭活所需要的pH,如下面所讨论。
步骤持续时间-这里提到的所有的步骤持续时间只是象征性的,如果特定步骤中层析图和收集指示时间,可以缩短实际步骤的持续时间。
病毒灭活-洗脱组份中的pH应保持在3.6或更低至少持续30分钟,用于适当的病毒灭活。如果洗脱组份具有更高的pH,需要通过添加酸滴定或通过对洗脱缓冲液体积的进一步优化降低pH。然后通过加入0.1 M NaOH调节pH,pH必须马上被调整到最匹配下一步上样条件。(例如对于阳离子交换为pH 5-6或对于Capto adhere为pH 6-8)。在洗脱期间可能会发生沉淀,且一般发生在pH滴定后低pH病毒灭活期间。有可能沉淀包含脂类和微量Mab、HCP和Protein A。这种沉淀物可以使用无菌过滤器去除-必须选择正确的过滤膜的孔径-尽管生产中通常使用的过滤膜孔径对于这一步已经足够大。
结论
推荐的工艺开发途径是采用HTPD和分析多个条件。本文件中提供的信息是基于以前的经验,并可以作为步骤开发的起点。为了获得步骤或工艺开发的进一步帮助,请联系您当地的GE Healthcare销售代表或GE Healthcare的Fast Trak部门。
注释:
*应使用正确装柱方法-详情见参考文献2(压缩系数1.15);
** 0.1 M醋酸将有大约2.9的pH,不具有缓冲能力。洗脱组份的结果pH将取决于洗脱组份体积和之前的洗涤缓冲液的缓冲能力。在大多数情况下,洗脱组份pH将在3.5-4.0之间;
***对于循环时间:假设物料浓度为2.5g/L,上样载量为35g/L。保存时间和保存后的平衡时间不计(~53分钟)。
参考文献