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细菌基因组DNA提取试剂使用说明书

浏览次数:13333 发布日期:2018-6-16  来源:本站 仅供参考,谢绝转载,否则责任自负

细菌基因组DNA提取试剂使用说明书

◆ 产品说明

基于硅胶柱纯化方式。试剂中的溶菌酶消化去除细菌的细胞壁,革兰氏阳性细菌还可加入玻璃珠涡旋破壁,在裂解液和蛋白酶作用下裂解消化,DNA释放到裂解液中。加入乙醇后,转移至吸附柱中过滤,DNA被吸附至吸附柱的膜上,而蛋白质则被去除。吸附柱经Buffer GW2洗涤后去除其他杂质,最后通过低盐缓冲液(Buffer AE等)洗脱DNA,洗脱的DNA可直接用于恒温荧光法和荧光定量PCR检测等。

◆ 产品组成

071021M

成份

含量

吸附柱

48个

2ml收集管

48个

 Buffer  STE

30 ml

 Buffer  SDS

2 ml

Buffer  DL

30 ml

  Buffer  GW2

20 ml

Buffer  AE

6 ml

Lysozyme

100 mg

 Proteinase K

24 mg

Protease Dissolve Buffer

2 ml

说明书

1份

 
  • 储存条件及有效期

Proteinase K干粉和Lysozyme为干粉状,常温运输,保存于2 - 8℃或-20℃,其他组分可在室温下保存,保质期为一年。低温状态下,Buffer SDS或有微量沉淀形成,需37℃下使其溶解。

  • 自备材料
  • 无水乙醇(≥96%);
  • 离心管和吸头;
  • 离心机;
  • 水浴锅或金属浴

◆ 试剂配制

1)添加0.6ml Protease Dissolve Buffer至Proteinase K干粉中,颠倒混匀使蛋白酶K充分溶解,于-20℃保存。

2)添加2ml Protease Dissolve Buffer至Lysozyme管子中,颠倒混匀使溶菌酶充分溶解,于-20℃保存。

3)添加40 ml无水乙醇稀释Buffer GW2,于室温下保存。

◆ 使用方法

一. 革兰氏阴性细菌DNA提取

 该方案适合于从﹤1.5 × 109个革兰氏阴性细菌中提取总DNA。细菌数量可以通过分光光度计进行测量。1OD600约为1.5 × 109个革兰氏阴性细菌。

  • 转移0.5-1ml细菌培养液(<1.5 × 109个细菌)至1.5ml离心管中。10,000rpm离心1分钟收集细菌,倒弃培养液。
  • 加入200µl Buffer STE、10µl Lysozyme和10µl Proteinase K至细菌沉淀团中。涡旋充分重悬细菌,37℃水浴10~30分钟。
  • 加入220µl Buffer DL至细菌重悬液中。涡旋混匀,65℃水浴消化30分钟。
  • 加入220µl无水乙醇至裂解液中。最高速度涡旋30秒。

注:这一步若有絮状沉淀出现,用移液枪吸打几次尽量打散沉淀。

  • 把吸附柱Column装在2ml收集管中。把第4步获得的混合液(包括沉淀)转移至吸附柱中。10,000rpm离心1分钟。

注:若吸附柱出现堵塞,提高离心速度至13,000 rpm,离心3分钟。

  • 倒弃滤液,把吸附柱装回收集管中。加入600µl Buffer GW2(已用乙醇稀释)至吸附柱中。10,000rpm离心1分钟。

注:Buffer GW2须用无水乙醇稀释,按瓶子标签或说明书指示进行稀释。

  • 倒弃滤液,把吸附柱装回收集管中。再加入300µl Buffer GW2(已用乙醇稀释)至吸附柱中。10,000rpm离心3分钟。
  • 将吸附柱装在新的1.5ml离心管中。加入30-50µl预热至65℃ Buffer AE至吸附柱膜中央。放置3分钟。10,000rpm离心1分钟。

9.  丢弃DNA结合柱,DNA保存于2-8℃,长期保存需保存于-20℃。

二. 革兰氏阳性细菌DNA提取

 该方案适合于从﹤1.5 × 109革兰氏阳性细菌中提取总DNA。细菌数量可以通过分光光度计进行测量。1OD600约为1.5 × 109个革兰氏阳性细菌。革兰氏阳性细胞的细胞壁很厚,不能直接进行裂解。需通过溶菌酶消化去除细胞壁。革兰氏阴性细菌和大部分的革兰氏阳性细菌如杆菌,通过酶法处理就可达到良好的破壁效果。某些革兰氏阳性细菌因带有很厚的细菌壁,还需结合珠磨法才能达到效果。

  • 酶法:采用溶菌酶(Lysozyme)消化细胞壁,把细菌转化为原生质体。葡萄珠菌属包有较厚的细胞壁,还需结合溶葡萄球菌素(Lysostaphin)一起消化。
  • 珠磨联酶法:先采用溶菌酶消化细胞壁,然后采用酸洗玻璃珠(0.1-0.2mm)高速涡旋振荡使细菌发生裂解。处理葡萄球菌,粪脓球菌等裂解细菌时,加入玻璃珠涡旋能明显提高产量。
  • 转移0.5-1ml细菌培养液(﹤1.5 × 109个细菌)至1.5ml离心管中。10,000rpm离心1分钟收集细菌,倒弃培养液。

注:若培养液密度比较大,离心速度和离心时间都可能需要提高,以保证细菌的充分沉淀收集。若需要从菌斑中提取DNA:用接种环刮下菌斑,按第2步进行操作,把菌斑转移至Buffer STE,涡旋混匀。

  • 加入200µl Buffer STE和30µl Lysozyme至细菌沉淀团中。涡旋充分重悬细菌,37℃水浴30分钟。处理葡萄球菌属的细菌时,最好再加入1µl Lysostaphin(20mg/ml)。
  • 加入15µl Buffer SDS和10µl Proteinase K至细菌重悬液中。涡旋混匀,65℃水浴消化30分钟。
  • 室温下,10,000rpm离心3分钟。转移上清液至新的离心管中。
  • 加入250µl Buffer DL和250µl无水乙醇至裂解液中。最高速度涡旋30秒。

注:这一步若有明显的絮状沉淀,用移液枪吸打几次尽量打散沉淀。

  • 把吸附柱Column装在2ml收集管中。转移第5步获得的混合液(包括沉淀)至吸附柱中。10,000rpm离心1分钟。

注:若吸附柱出现堵塞,提高离心速度至13,000 rpm,离心3分钟。

  • 倒弃滤液,把吸附柱装回收集管中。加入600 µl Buffer GW2(已用乙醇稀释)至吸附柱中。10,000rpm离心1分钟。

注:Buffer GW2须用无水乙醇稀释,按瓶子标签或说明书指示进行稀释。

  • 倒弃滤液,把吸附柱装回收集管中。再加入300µl Buffer GW2(已用乙醇稀释)至吸附柱中。10,000rpm离心2分钟。
  • 将吸附柱装在新的1.5ml离心管中。加入30-50µl预热至65ºC Buffer AE至吸附柱膜中央。放置3分钟。10,000rpm离心1分钟。
  • 丢弃DNA结合柱,DNA保存于2-8℃,长期保存需保存于-20℃。

三.组织或液体样品中细菌DNA提取

该方案适合于从各种组织、血液、分泌液等液体样品中提取基因组DNA和寄生的细菌DNA。纯化的DNA可直接用于各种细菌的检测。若需从粪便样品中提取细菌DNA,我们推荐使用DePure Stool DNA Kit,若需要从土壤样品中提取细菌DNA,推荐使用DePure Soil DNA Kit。

  • 按以下方案进行预处理:
  • 固体样品:将10mg固体样品剪切成小碎片,并转移至1.5ml离心管中,加入200µl Buffer STE和10µl Buffer SDS。
  • 全血样品:取<1ml抗凝血液按常规流程分离得到细胞和细菌。加入200µl Buffer STE和10µl Buffer SDS,用移液枪吸打重悬细胞。
  • 分泌物或血清等: 10,000 × g离心3分钟收集细胞和细菌;倒弃上清液,加入200µl Buffer STE和10µl Buffer SDS,用移液枪吸打重悬细胞。
  • 粘稠的分泌液:取100µl或100mg 痰液等,加入100µl Buffer STE,10µl Buffer SDS和5 µl 1M 二硫苏糖醇DTT。(若需要从痰液中分离结核杆菌或真菌,可先用NaOH进行痰液液化,离心收集得到沉淀后再进行操作。)
  • 加入10µl Proteinase K至重悬液中。涡旋混匀。55℃水浴1-3小时或直至样品完全消化。按细菌和细胞总DNA的提取流程,或难裂解细菌提取流程进行操作。

细菌和细胞总DNA提取 

  • (可选) 95℃水浴10分钟进一步裂解细菌。
  • 10,000rpm离心3分钟。转移上清液至新的1.5ml离心管中。
  • 加入200µl Buffer DL和200µl无水乙醇至上清液中。涡旋20秒。
  • 按第7-12步进行操作。

难裂解细菌DNA提取

  • 10,000rpm离心3分钟收集未消化的细菌。吸弃所有的上清液。
  • 加入200µl Buffer STE和30µl Lysozyme至细菌沉淀团中。涡旋充分重悬细菌,37℃水浴30-60分钟。处理葡萄球菌属的细菌时,最好再加入1µl Lysostaphin(20mg/ml)。
  • 加入20µl Buffer SDS至细菌重悬液中。涡旋混匀,95℃水浴10分钟。
  • 加入250µl Buffer DL和250µl无水乙醇至裂解液中。最高速度涡旋30秒。按第7-12步进行操作。

过柱吸附DNA

  • 把吸附柱Column装在2ml收集管中。转移上一步获得的混合液(包括沉淀)至吸附柱中。10,000rpm离心1分钟。

注:若吸附柱出现堵塞,提高离心速度至13,000rpm,离心3分钟。

  • 倒弃滤液,把吸附柱重新装回收集管中。加入650 µl Buffer GW2(已用乙醇稀释)至吸附柱中。10,000rpm离心1分钟。

注:Buffer GW2须用无水乙醇稀释。按瓶子标签或说明书指示进行稀释。

  • 倒弃滤液,把吸附柱重新装回收集管中。再加入300 µl Buffer GW2(已用乙醇稀释)至吸附柱中。10,000rpm离心2分钟。
  • 将吸附柱装在新的1.5ml离心管中。加入30-100µl预热至65℃ Buffer AE至吸附柱膜中央。放置3分钟。10,000rpm离心1分钟。
  • 再加入30-100µl预热至65℃ Buffer AE至吸附柱的膜中央。放置3分钟。10,000rpm离心1分钟。

12.  丢弃DNA结合柱,DNA保存于2-8℃,长期保存需保存于-20℃。

四.拭子样品中细菌总DNA提取

该方案适合于从各种拭子样品中提取基因组DNA和总细菌DNA。

  • 转移拭子样品至2ml离心管中。加入350µl Buffer STE和30µl Lysozyme至拭子样品中。涡旋充分重悬细菌,37℃水浴10-30分钟。处理葡萄球菌属的细菌时,最好再加入1µl Lysostaphin(20mg/ml)。
  • 加入30µl Buffer SDS和10µl Proteinase K至细菌重悬液中。涡旋混匀,65℃水浴消化30分钟。
  • (可选)95℃水浴10分钟进一步裂解难裂解的细菌。
  • 加入400µl Buffer DL和400µl无水乙醇至裂解液中。涡旋20秒。
  • 把DNA柱装在收集管中。转移600µl混合液(第4步获得的混合液)至吸附柱中。10,000rpm离心1分钟。
  • 倒弃流出液,把吸附柱装回收集管中。把剩余的混合液转移至吸附柱中。10,000rpm离心1分钟。
  • 倒弃滤液,把吸附柱重新装回收集管中。加入650 µl Buffer GW2(已用乙醇稀释)至吸附柱中。10,000rpm离心1分钟。

注:Buffer GW2须用无水乙醇稀释。按瓶子标签或说明书指示进行稀释。

  • 倒弃滤液,把吸附柱重新装回收集管中。再加入300 µl Buffer GW2(已用乙醇稀释)至吸附柱中。10,000rpm离心2分钟。

9.   将吸附柱装在新的1.5ml离心管中。加入30-50µl预热至65℃ Buffer AE至吸附柱膜中央。放置3分钟。10,000rpm离心1分钟。丢弃DNA结合柱,DNA保存于2-8℃,长期保存需保存于-20℃。

注意事项

1.实验过程中穿戴工作服、乳胶手套和口罩,使用移液器,试验产生的所有废弃物及时处理。

2.请严格按照操作步骤操作,如有技术问题,请及时与我们联系。

3.请在有效期内使用试剂盒。

来源:上海一基实业有限公司
联系电话:021-60536261
E-mail:2851717098@qq.com

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