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核酸快速银染试剂盒
英文名称:Fast Silver Stain Kit for Nucleic Acids总访问:566
国产/进口:国产半年访问:34
产地/品牌:百奥莱博产品类别:分子生物学试剂
规       格:RFT206 最后更新:2025-2-13
货       号:RFT206
CAS   号:
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销售商: 北京百奥莱博科技有限公司 查看该公司所有产品 >>
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特别提示:包括核酸快速银染试剂盒在内,本公司的所有产品仅可用于科研实验,严禁用于临床医疗及其他非科研用途!


产品名称:核酸快速银染试剂盒
英文名称:Fast Silver Stain Kit for Nucleic Acids
产品货号:RFT206
产品规格:25次

核酸快速银染试剂盒是一种快速简单、可用于聚凝胶中的核酸检测的试剂盒。其检测原理是:银离子(Ag+)可与核酸形成稳定的复合物,随后Ag+在碱性环境下被还原剂如甲醛还原成银颗粒,后者通过显色可把核酸电泳条带染成黑褐色。该方法检测灵敏度比EB高达200倍,能检测到10ng的DNA条带,常用于检测SSR标记、SNP标记等。
本试剂盒可足够用于25块常规的8×10cm凝胶的银染。
产品组份:
 
组分 规格 保存条件
染色增敏液(10×) 250mL RT,用前按照标签加入无水乙醇
染色加速液(10×) 250mL RT
银溶液(100×) 26 mL RT,避光
基本显色液(10×) 250mL RT
显色加速液(500×) 5mL RT,避光
保存条件:
常温保存,开封后一年有效。

注意事项:
1、由于银染非常灵敏,操作时请尽量使用高纯度的水,并确保所使用器皿非常清洁,最好使用洁净的玻璃器皿。操作时必须戴手套,避免皮肤和凝胶直接接触。
2、需自备无水乙醇及MilliQ级纯水。
3、下述使用说明中各种溶液的使用量适用于大小为8×10cm厚度为0.75-1mm的凝胶。对于更大的凝胶,各种溶液使用量需按凝胶面积的比例放大,对于更厚的凝胶,作用时间需按照厚度比例适当延长。
4、本说明书所指的常温温度为20-25℃,操作温度较低时由于溶液的扩散能力下降,各步骤需适当延长时间。
5、银染基本显色液(10×)在低温环境下可能会出现沉淀,可在30-37℃水浴中溶解,充分混匀后使用。
使用方法:
一、漂洗步骤:

电泳结束后,凝胶中加入100ml MilliQ级纯水,在摇床上常温摇动2分钟,摇动速度为60-70rpm;重复此步骤1次。
二、银染步骤:
1、银染:
弃水,加入100mL即用型染色液,在摇床上常温摇动5分钟,摇动速度为60-70rpm。
 
即用型染色液配制量 100mL
超纯水 79mL
染色增敏液(10×) 10mL
染色加速液(10×) 10mL
银溶液(100×) 1mL
【注】:
● 即用型染色液配制后需在20分钟内使用。
2、水洗涤:
弃原有溶液,加入100mL MilliQ级纯水或双蒸水,在摇床上室温摇动15-20秒,摇动速度为60-70rpm。
【注】:
● 水洗涤的时间不能超过20秒。
三、显色步骤:
弃水,加入100mL银染显色液,在摇床上室温摇动3-10分钟,直至出现比较理想的预期核酸条带,摇动速度为60-70rpm。
 
银染显色液配制量 100mL
超纯水 89.8 mL
基本显色液(10×) 10mL
显色加速液(500×) 0.2mL
【注】:
● 银染显色加速液(500×)有刺激性气味,建议在通风橱内操作;
● 银染显色液配制后需在20分钟内使用。
四、终止步骤:
弃银染显色液,加入100mL MilliQ级纯水,在摇床上常温摇动3-5分钟,摇动速度为60-70rpm。
五、保存:
可在MilliQ级纯水中保存;或采用适当的方式制备成干胶。
常见问题:
● 背景太深:
(1)显色时间过长。通常显色反应会在10分钟内结束,显色反应时间过长会导致背景很深。
(2)水的纯度太低。需使用大于16MΩ·cm的高纯度水。
● 核酸条带非常浅:
(1)银染后水洗涤时间过长。在银溶液染色时需严格控制水洗涤的时间,水洗涤时间不能超过20秒,否则会导致过多的银离子被洗去,导致检测灵敏度下降。
(2)核酸银染显色加速液(500×)失效。核酸银染显色加速液(500×)不能低温保存,低温保存会导致加速液失效。
● 凝胶上出现小点或其它非核酸的痕迹:
(1)凝胶没有充分被溶液浸没。请注意选择大小合适的容器,并加入足量的各种溶液,同时需保持适当的混匀速度确保凝胶可以被溶液浸没。
(2)用于银染的容器没有充分洗涤干净。容器需先用洗涤剂充分洗涤,随后用自来水充分冲洗,最后用高纯度水再洗涤数次。该容器最好能专用于银染,并注意避免各种可能的污染。
(3)指纹或其它压痕。请注意戴手套操作,切勿直接接触皮肤。操作时请注意尽量勿挤压、折叠或摩擦凝胶。
(4)有金属物质接触凝胶。金属物质例如金属镊子等接触凝胶会出现非特异性痕迹。

根据您的关注的核酸快速银染试剂盒,您可能还对以下产品有需求:


BTN51210 超快核酸电泳液(干粉) 50L
BTN100875 DNA非变性PAGE上样液 1.5mL
BTN3130B 三合一RNA上样液(B型,6X) 1.5mL
BTN3092 溴化乙锭清除剂(EB清除剂) 100次
BTN131187 Acryl DNA助沉剂 1mL
YT010 DNA凝胶回收试剂盒 50次
YT420 低电渗琼脂糖 50g|250g
YT422 TBE Buffer(5X)(TBE 缓冲液) 500ml

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名称:一站式RNA电泳套装
货号:BTN60904
规格:10次
本品是包括琼脂糖、去离子甲醛、RNA上样液、电泳液等在内的RNA电泳套装,专门用于RNA电泳分析。可以进行至少10次mini变性胶电泳。

产品特点:
1. 即开即用,用户不需要自己进行RNase 灭活、高压灭菌、pH调节等操作。
2.与Northern杂交等后续反应兼容。

产品组成:
 
成分 规格
琼脂糖 5g
超纯水 250ml
甲醛 60ml
RNAload(含EB) 0.5ml
RNAep,10× 100ml
说明书 1份


储存条件:常温运输和保存,但收到货后RNAload 需要4℃保存,RNAep,10×一旦打开需要-20℃保存,有效期一年。

使用方法:
注意:所有器皿(三角瓶,电泳槽,枪头等)均需去除RNase。强烈推荐使用本公司的超强无毒的固相RNase 清除剂。

一、配制琼脂糖甲醛变性胶(1.2%,100mL)
1.在三角瓶中加入下列成份:琼脂糖 1.2-1.5g;DEPC水 87mL
2. 将琼脂糖加热融化后,加入10mL 10×RNAep(10×RNAep 就是10×MOPS缓冲液,其瓶子一旦打开,就很容易产生污染细菌,细菌大量繁殖后会释放大量 RNase,所以剩下的10×RNAep 最好-20℃放置)。
3. 待胶冷却至 60℃左右,再加下列成份:甲醛 3.0mL;自备EB(10mg/mL)2-4μL
注意:由于本试剂盒提供的RNAload中含EB,所以也可以不加EB,但效果较差。如果使用自备的其他染料,如SYBR Green I,则不能同时使用其他染料,包括含EB的RNAload,用户需要另购不含EB的RNAload)。
4. 混匀后倒胶,凝固半小时后即可以使用。

二、配制电泳液
5. 将RNAep 用DEPC 水稀释十倍后即成电泳液,所需要的体积根据使用的电泳槽决定。

三、变性RNA样品
6.在一干净的离心管中将5-10μL RNA和15μL RNAload 混合,50-60℃保温10分钟后冰浴5-10分钟,直接上样。注意:每一泳道至多可分析30μg RNA,通常用10-20μg 总RNA进行Northern杂交,可以检测高丰度mRNA(占mRNA 总量的0.1%以上);如待测RNA含量极微,每个泳道需加0.5-3.0μg poly(A)+ RNA。

四、电泳
7.电泳时,将凝胶预电泳5 min(电压为5 V/cm)。随后加样品和分子量对照(如果有的话),以3-4 V/cm的电压电泳,直至染料迁移至胶下游的3/4处。
8.电泳结束后,在300nm 紫外灯下拍照。

五、后续处理
9. 按标准方法进行Northern杂交等后续处理。

使用效果:
一站式RNA电泳套装
图注: 用本产品电泳兔全血总RNA效果图。10μL 总RNA与15μL RNAload 混合后在甲醛琼脂糖变性胶上电泳0.5小时,直接在紫外灯下观察并照相。

疑难解答:
Q:RNA电泳为何最好使用RNAep,不要使用DNA电泳液TAE或TBE?
A:一是因为RNAep 经过去RNase处理,而一般实验室使用的TAE或TBE都没有经过去RNase处理,故极有可能含RNase,使样品RNA 降解。即使要灭活TAE或TBE中的RNase 也十分麻烦,因为DEPC 不能处理含Tirs的缓冲液;二是TEB含有硼酸,硼酸是研究多羟基醇和糖的经典试剂,它能与RNA中含多羟基的核糖反应生成糖硼酸络合物,故电泳时RNA 带型十分弥散。在一定浓度范围内,RNA分子间还能通过硼酸形成分子间复合物,出现电泳时各种RNA以一条带的形式出现的现象。所以RNA电泳时要避免使用含硼酸的缓冲液。使用TAE效果虽然比TBE 稍好,但文献报道(BioTechniques 2000,28:414-415),它不能分离某些大小不同的RNA分子。
Q:上样孔里的红色荧光物一定是污染的基因组DNA 吗?
A:不是。用TAE或TBE电泳液和非变性胶电泳RNA时容易产生此现象,初步研究发现大部分红色荧光物是变性不充分的单链RNA通过碱基互补或通过硼酸络合(如果使用TBE作电泳液的话)形成的复合物,加RNase处理后,这些红色荧光物一般会消失。为避免此现象,建议最好使用甲醛变性胶电泳。如果需要使用非变性胶,也必须在上样前使RNA变性。
使用百奥莱博优化的上样/变性/染色三用溶液RNAload可以使RNA在非变性胶上电泳时也有较好分辨率。使用非变性胶时,可以使用TAE或超快电泳液SuperBuffer-2,最好不要使用TBE缓冲液,因为TBE中的硼酸能与RNA的多羟基形成复合物,RNA 很难形成锐利的条带。
Q:如何确认和去处除污染的基因组DNA?
A:如果怀疑有DNA污染,可以用RNase处理RNA样品,然后再电泳。如果上样孔里的红色荧光物不消失,则表示是基因组DNA污染。进一步确认可以使用PCR扩增法。去除污染的DNA可以使用非酶的DNA去除剂DNAScavenger或RNase-free DNase,由于RNase-free DNase一般都有残留的RNase污染,所以必须严格按照厂家提供的使用手册进行操作。
Q:为何我的植物RNA样品有4-5 条带?
A:部分植物组织有叶绿体等质体,而叶绿体有核糖体,所以也有其rRNA。
叶绿体的rRNA跟细胞浆里面核糖体的rRNA大小不同,所以一般会多出两条带(共4 条rRNA 条带)。小的tRNA和5S rRNA 有时可见,有时不可见,取决于回收效率。
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