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大鼠体温测量仪,小鼠体温测量仪
英文名称:大鼠体温测量仪,小鼠体温测量仪(大小鼠体温计)总访问:1522
国产/进口:进口半年访问:20
产地/品牌:大鼠体温计,小鼠体温计,动物体温计,小动物体温计,小鼠体温测量仪产品类别:动物实验仪器
型       号:大鼠体温计,小鼠体温计,动物体温计,小动物体温计,小鼠体温测量仪 最后更新:2025-2-23
货       号:大鼠体温测量仪,小鼠体温测量仪
参考报价:请致电:021-35183767,Email:yuyan0317@126.com
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销售商: 上海玉研科学仪器有限公司 查看该公司所有产品 >>
  • 产品介绍
  • 公司简介

小动物体温计主要用户测量大鼠、小鼠、兔子的体温,选择合适的探头,也可以测量肛温、组织温度、皮肤温度;




型号:H-100 (推荐)
 


型号:BAT-12 
 

主要特点:
· 精度:0.1°C的显示精度,完美的稳定性;
· 测量范围:-100°C-200°C;
· 多种探头可选:针状、软光纤、平面、带圆头等适合各种脏器、软组织的探头;
· 应用:脑温测量、肝温测量、组织液温度测量、各脏器腔内温度测量、肛温测量等;
· 输出:模拟输出功能;


配备三角支架的体温计主机(三角支架为选配件)


多种温度探头可选:



将传感器检测头插入试验动物肛门,可以使用润滑油辅助;传感器的插入深度以不少于全长的3/4为宜。


如果待测老鼠数量多,可以根据需要,选择多通道温度测量仪:




主要特点:
· 精度:0.1°C的显示精度,完美的稳定性;可在电脑上进行编程;
· 同时可以测量1-7只动物;
· 精确度为±0.1°C;
· 稳定性为±0.1°C;
· 分辨率为0.01°C ;
· 每秒测量16个数值;

动物体温维持仪(动物手术保温毯)(对手术过程中的动物和术后恢复的动物进行保温,同时进行动物体温测量,对加热功率进行反馈式控制,方便实用,敬请来电咨询)
动物手术保温毯具有测温、控温和电加热功能,用于维持试验动物正常体温。本仪器测、控精度高,响应迅速快,工作稳定可靠,无电磁干扰。

动物手术保温毯的技术性能:
1、 测温范围:0.0℃~99.9℃                      
2、 控温范围:0℃~80℃
3、 测、控温精度:0℃~80℃ 范围内误差≤±0.2℃
4、 加热电源额定输出功率:40W
5、 设定按键:触摸按键
6、 数字显示:数码管
7、 工作电源:50Hz  AC220V±10%
8、 仪器尺寸:250×195×100mm
9、 加热毯尺寸:500×300mm
 
动物手术保温毯的使用方法:
1、 仪器连接;
A、 将加热毯的连接线接入仪器后面板上的“加温”插口上;
B、 将传感器接入仪器后面板上的“传感器”插口上;
C、 连接电源线;

根据需求,也可以选择动物体温遥测系统 和 植入式体温胶囊:

动物体温遥测系统
· 无线遥测,测量动物的心率、体温、活动量
· 植入式E-Mitter转发器没有电池
· 长期监测-植入装置后允许连续、遥测实验动物一生
· 准确、可靠,报告清醒无束缚动物的生理和行为数据

     

植入式体温胶囊:
·  体积小巧,食用方便,对机体无损害
·  实时连续无创监测
·  传输参数:传输距离1-3m,传输频率433Hz
·  使用寿命:20天
·  规格参数:17.7*8.9mm,重1.7g


 

小动物体温计参考文献:
1.Kravchenko JA, Goldberg EM, Mattis J. Optogenetic and chemogenetic manipulation of seizure threshold in mice. STAR Protocols. 2023/03/17/ 2023;4(1):102019.
2.Kawano S, Itoh K, Ishihara Y. Maternal intake of docosahexaenoic acid decreased febrile seizure sensitivity by increasing estrogen synthesis in offspring. Epilepsy & Behavior. 2021/08/01/2021;121:108038.
3.Ganesan V, Sharma A, Tomar S, Schuler CF, Hogan SP. IL-4 receptor alpha signaling alters oral food challenge and immunotherapy outcomes in mice. Journal of Allergy and Clinical Immunology.2023/01/01/ 2023;151(1):182-191.e186.
4.Sarver DC, Xu C, Velez LM, et al. Dysregulated systemic metabolism in a Down syndrome mouse model.Molecular Metabolism. 2023/02/01/ 2023;68:101666.
5.Himmel NJ, Sakurai A, Donaldson KJ, Cox DN. Protocols for measuring cold-evoked neural activity and cold tolerance in Drosophila larvae following fictive cold acclimation. STAR Protocols. 2022/09/16/2022;3(3):101510.
6.Tang J-S, Chiang CY, Dostrovsky JO, Yao D, Sessle BJ. Responses of neurons in rostral ventromedial medulla to nociceptive stimulation of craniofacial region and tail in rats. Brain Research. 2021/09/15/2021;1767:147539.
7.Sprenger RJ, Milsom WK. Respiratory development in burrowing rodents: Effect of perinatal hypercapnia. Respiratory Physiology & Neurobiology. 2021/06/01/ 2021;288:103640.
8.Xiao H, Bozi LHM, Sun Y, et al. Architecture of the outbred brown fat proteome defines regulators of metabolic physiology. Cell. 2022/11/23/ 2022;185(24):4654-4673.e4628.
9.Fischer AW, Jaeckstein MY, Gottschling K, et al. Lysosomal lipoprotein processing in endothelial cells stimulates adipose tissue thermogenic adaptation. Cell Metabolism. 2021/03/02/ 2021;33(3):547-564.e547.
 


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